ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ В ВЕТЕРИНАРНОЙ ПРАКТИКЕ: ИХ КЛИНИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ, ОСНОВНЫЕ МЕТОДЫ И ВИДЫ
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ В ВЕТЕРИНАРНОЙ ПРАКТИКЕ: ИХ КЛИНИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ, ОСНОВНЫЕ МЕТОДЫ И ВИДЫ


Автор (ы):  Н. А. Иванова
Организация(и):  Ветеринарный центр патоморфологии и лабораторной диагностики доктора Митрохиной Н.В.
Журнал:  №3 - 2018

УДК 619: 616-006:616-091.8 

Ключевые слова:

гематология, общий клинический анализ крови, лейкоцитоз, лейкопения, анемия, эритроцитарные индексы

Key words: hematology, general clinical analysis of blood, leukocytosis, leukopenia, anemia, erythrocyte indices.

Список сокращений: WBC – лейкоциты; RBC – эритроциты; HGB –

гемоглобин; HCT – гематокрит; MCV – средний объем эритроцита; MCH – среднее содержание гемоглобина в определенном эритроците; MCHC – среднее содержание гемоглобина во всех эритроцитах; RDW-CV – процентное распределение эритроцитов по объему; PLT – тромбоциты; СОЭ – скорость оседания эритроцитов; EDTA – этилендиаминтетрауксусная кислота.

Аннотация

Исследование венозной и периферической крови является основным диагностическим минимумом в процессе проведения клинического обследования животного, а также важным этапом в клинической диагностике гематологических заболеваний. Данные гематологического анализа дополняют клиническую картину заболевания, позволяют уточнить диагноз, следить за ходом течения патологического процесса, прогнозировать исход заболевания.

В данной статье разобраны этапы пробоподготовки биологического материала, освещены основные методы гематологических исследований в ветеринарной медицине, описаны возможные причины возникновения диагностических ошибок преаналитического этапа.

Summary

The study of venous and peripheral blood is the main diagnostic minimum during the clinical examination of the animal, as well as an important stage in the clinical diagnosis of hematological diseases. The data of the hematological analysis supplement the clinical picture of the disease, allow to clarify the diagnosis, monitor the course of the pathological process, predict the outcome of the disease.

In this article, the stages of sample preparation of biological material are analyzed, the main methods of hematological studies in veterinary medicine are covered, possible causes of the diagnostic errors of the preanalytical stage are described.

Введение

В настоящее время большинство ветеринарных лабораторий выполняет полный общий клинический анализ крови, который включает в себя данные, полученные при автоматизированном подсчете на гематологическом анализаторе, ручном дифференцированном подсчете лейкоцитов в мазке крови с использованием световой микроскопии, а также измерение скорости оседания эритроцитов (СОЭ). На основании полученных результатов в некоторых случаях появляется необходимость в комплексном гематологическом обследовании, которое включает в себя ряд специальных диагностических методов.

Достоверность и точность гематологических исследований, материалом для которых служит венозная кровь, во многом определяется техникой взятия исследуемых образцов.

Техника взятия образцов венозной крови

Подготовка пациента к взятию крови из вены включает несколько этапов. Место пункции следует дезинфицировать марлевой салфеткой или специальной безворсовой салфеткой, смоченной 70°С спиртом или другим антисептиком. Применение ватных тампонов и других волокнистых материалов подобного рода может привести к засорению волокнами счетной и гемоглобиновой камер, что приводит к снижению точности и воспроизводимости измерения. В процессе взятия материала не рекомендуется сильно сдавливать вену жгутом или фиксирующей повязкой, во избежание попадания в образец тканевой жидкости. После взятия образца крови пробирку необходимо несколько раз плавно перевернуть. В образцах исключается присутствие микросгустков. В таких случаях необходимо проводить перезабор материала. Хранение образцов допускается в течение 24 час. при температуре 4-8°.

На сегодняшний день в качестве антикоагулянта используют калийные соли этилендиаминтетрауксусной кислоты – EDТА. Следует помнить, что применение в качестве антикоагулянта гепарина натрия/гепарина лития или цитрата натрия сопровождается структурными изменениями клеток крови и не рекомендуется для использования, как при проведении автоматизированного исследования, так и для морфологического исследования крови.

Этапы проведения исследования

Таблица 1. Расшифровка показателей автоматизированного подсчета образцов крови.

показатель

расшифровка и единицы измерения

практическое обоснование

WBC

White Blood cells/лейкоциты, тыс./мл

абсолютный/относительный лейкоцитоз; абсолютная/относительная лейкопения

RBC

Red Blood Cells/эритроциты, млн /мл

различные типы анемий/эритроцитоз

HGB

Hb, Hemoglobin, гемоглобин, г/л

 

диагностика анемий и других гематологических заболеваний

MCV

средний объем эритроцита, фл

морфологическая классификация типов анемий

HCT

Hematocrit, Гематокрит,%

соотношение объема эритроцитов к общему объему крови

MCH

Mean concentration hemoglobin/среднее содержание гемоглобина в определенном эритроците, мг

идентичен значению цветового показателя крови

MСНС

Mean corpuscular hemoglobin concentration/ среднее содержание гемоглобина во всех эритроцитах, мг

отражает степень насыщения эритроцитов гемоглобином

RDW-CV

Red cell Distribution Width/распределение эритроцитов по объему в %

степень анизоцитоза эритроцитов (коэффициент вариации)

PLT

platelets/тромбоциты содержание тромбоцитов, тыс./мкл.

тромбоцитопения/тромбоцитоз

Лейкоциты – клетки крови, основная функция которых заключается в защите организма от чужеродных антигенов. Средние значения для собак: 6,0-16,0 тыс./мл: кошек 5,5-18,5тыс./мл.

Наиболее частые причины лейкоцитоза:

  • бактериальные инфекции;
  • воспалительные процессы и некроз тканей;
  • интоксикация;
  • злокачественные новообразования
  • лейкозы;
  • аллергические реакции;
  • результат действия кортикостероидов, адреналина, гистамина, ацетилхолина, ядов насекомых, эндотоксинов.

Наиболее выраженный лейкоцитоз отмечается при острых и хронических лейкозах, а также при гнойных заболеваниях внутренних органов (пиометра, абсцессы и пр.). Относительно длительное повышение общего числа лейкоцитов наблюдается у беременных, и при длительном курсе кортикостероидов. Лейкоцитоз делится на абсолютный и относительный.

Абсолютный лейкоцитоз – повышение количества лейкоцитов в крови вследствие усиления лейкопоэза реактивного или опухолевого характера в кроветворных органах или же увеличенного их поступления из костномозгового депо в кровеносные сосуды.

Относительный лейкоцитоз – это увеличение концентрации в крови лейкоцитов, вызванное перераспределением их от пристеночного пула в циркулирующий пул, а также скоплением лейкоцитов в очаге воспаления. Кроме того, в связи с тем, что возрастание общего числа лейкоцитов обычно сочетается с преимущественным увеличением количества отдельных видов лейкоцитов, лейкоцитоз подразделяется на нейтрофилез, эозинофилию, базофилию, лимфоцитоз и моноцитоз.

Дифференциальный анализ полученных показателей имеет ключевое значение в постановке окончательного диагноза и составления схемы лечебных мероприятий. Абсолютное повышение количества лейкоцитов может сопровождаться увеличением отдельных фракций за счет понижения других. Например, нередко на практике наблюдается относительный нейтрофилез на фоне нормальных показателей общего количества лейкоцитов. При этом можно наблюдать относительное снижение количества лимфоцитов – относительную лимфопению. Полученные данные могут говорить о нейтрофильном регенераторном сдвиге или о кратковременном физиологическом повышении отдельных лейкоцитарных фракций. В таких случаях относительное повышение нейтрофилов не всегда играет диагностическую роль и дает основание думать о развитии патологического процесса.

Эритроцитарные индексы. Дифференциальная диагностика анемий

Анемии делятся на две основные группы: регенераторные и не регенераторые.

Регенераторные анемии не связаны с нарушением работы костного мозга и возникают вследствие кровотечения или гемолиза. При не регенераторных анемиях наблюдаются нарушения функций костного мозга, связанные с невозможностью компенсировать снижение количества эритроцитов. Для дифференциальной диагностики регенераторной и не регенераторной анемий исследуют следующие показатели.

Эритроциты – безъядерные форменные элементы крови, содержащие гемоглобин, составляют основную массу форменных элементов крови. Среднее значение их для собак – 5,6-8,0 млн/мл; кошек – 5,3-10,0 млн/мл.

Наиболее частые причины эритроцитоза:

  • эритремия – абсолютный первичный эритроцитоз (усиление выработки эритроцитов)

  • реактивные эритроцитозы, вызванные гипоксией (вентиляционная недостаточность при бронхолегочной патологии, пороки сердца)

  • относительные эритроцитозы при гипогидратации.

Понижение общего количества эритроцитов наблюдается при:

  • анемии (железодефицитная, гемолитическая, гемопластическая и т.д.)

  • острой кровопотере;

  • поздних сроках беременности;

  • хроническом воспалительном процессе;

  • гипергидратации

При различных патологических состояниях удается выявить изменения формы и размера эритроцитов. Подобные морфологические изменения можно выявить только при микроскопии мазков крови. Исследование крови только на автоматическом гематологическом анализаторе не позволяет определить данные изменения.

Морфологические характеристики эритроцитов

Пойкилоцитоз – нарушение формы (появление вытянутых, овальных, серповидных, грушевидных эритроцитов). Наблюдается практически при любых анемиях.

Анизоцитоз – появление эритроцитов различного размера (нормоцитов, микроцитов, макроцитов). К основным причинам относят железодефицитную анемию, гипопластическую анемию, гемоглобинурию и миелопролиферативные заболевания.

Гипохромия характеризуется низким содержанием гемоглобина и возникает вследствие железодефицитных состояний, отравлений.

Гиперхромию отличает повышенное содержание гемоглобина, встречающееся при В12 фолиеводефицитных анемиях, хронических гастроэнтеритах, дифиллоботриозе, беременности.

Тельца Жолли, кольца Кебота – остатки ядерных субстанций в эритроцитах, появляются при напряжении эритропоэза (гемолиз, кровопотеря).

Базофильная зернистость. Встречается при B12-фолиеводефицитных анемиях.

Мишеневидные эритроциты – затемнение в центре эритроцитов при талассемии (наследственное нарушение синтеза гемоглобина).

Фрагментированные эритроциты – обломки эритроцитов, или эритроциты, потерявшие целостность цитоплазмы. В значительном количестве встречаются при ДВС-синдроме, гемолизе.

Гематокрит (HCT) – соотношение объема эритроцитов и плазмы (объемная фракция эритроцитов в крови). Среднее значение для собак – 38-55 %, кошек – 28-48 %.

Повышенное значение:

  • первичные и вторичные эритроцитозы (повышение количества эритроцитов);

  • дегидратация (заболевания ЖКТ, сопровождающиеся профузной диарей, рвотой; диабетом);

  • уменьшение объема циркулирующей плазмы (перитонит, ожогова

я болезнь).

Пониженное значение:

  • анемии;

  • повышение объема циркулирующей плазмы(сердечная и почечная недостаточность, гиперпротеинемии);

  • хронический воспалительный процесс, травмы, голодание, хроническая гиперазотемия, онкологические заболевания;

  • гемоделюция

(внутривенное введение жидкостей, особенно при сниженной функциональной способности почек).

Гемоглобин (HGB) – сложный белок, кровяной пигмент. Содержится в эритроцитах, основная функция – перенос кислорода и углекислого газа, регуляция кислотно-основного состояния. Среднее значение для собак – 120-180 г/л, для кошек – 80-150 г/л. Повышенное значение: первичные и вторичные эритроцитозы; относительный эритроцитоз при дегидратации.

Пониженное значение: различные виды анемий; острая кровопотеря (в первые сутки кровопотери из-за сгущения крови, обусловленного большой потерей жидкости, концентрация гемоглобина не соответствует картине истинной анемии); скрытые кровотечения; эндогенная интоксикация (злокачественные опухоли и их метастазы); поражение костного мозга; заболевания почек; гемоделюция (вызывает ложную анемию).

Среднее значение MCV для собак – 60-70 фл, для кошек – 43-53 фл. Повышенное значение – макроцитоз, характеризующийся: макроцитарными и мегалобластическими анемиями (B12 фолиеводефицитные); гемолитической анемией; гипотериозом; онкологическими заболеваниями; заболеваниями печени.

Нормальные значения MCV: нормоцитарные анемии (апластическая, гемолитическая, кровопотери, гемоглобинопатии); регенераторная фаза железодефицитной анемии, миелодиспластические синдромы.

Пониженные значения MCV: микроцитарные анемии (железодефицитная, сидеробластическая, талассемия); встречаются при гемолитических анемиях, гемоглобинопатиях.

Средняя концентрация гемоглобина в эритроцитах (MCHC) для собак – 33-38%, для кошек – 32-36%. Данный показатель используют для определения типа анемий. Существует определенная формула расчета: MCHС=HGB/RBC. Высокие значения средней концентрации гемоглобина являются ошибкой аналитического этапа и не и играют диагностической роли. Причиной может быть гемолиз, хилез, присутствие телец Хейнца, агглютинация эритроцитов или неисправности гематологического анализатора.

Повышенные значения: гиперхромные анемии; пониженные: гиперхромные железодефицитные анемии; анемии, возникающие на фоне онкологических заболеваний.

RDW-CV процентное распределение эритроцитов – среднее для собак – 16%, для кошек – 14-18 %, свидетельствует о том, насколько эритроциты различаются между собой по размерам. Повышается при анизоцитозе эритроцитов. Понижение показателя не играет диагностической роли.

Учитывая значения эритроцитарных показателей, различают 4 морфологические разновидности эритроцитов, которые лежат в основе классификации анемий.

1.    Макроцитарные гипохромные (снижение MCHC; повышение MCV).

При микроскопии мазков часто наблюдается полихромазия эритроцитов и появление ядерных форм эритроцитов – нормобластов. В таких случаях рекомендовано проводить подсчет ретикулоцитов.

Ложная макроцитарная гипохромная анемия может наблюдаться у собак и кошек с персистирующей гипернатриемией.

2.    Макроцитарные нормохромные анемии (повышение MCV).

Относятся к регенераторным анемиям с незначительным ретикулоцитозом. Возникают при вирусной лейкемии кошек, миелодиспластических синдромах, миелофиброзе у собак. У кошек и у пуделей макроцитоз встречается в норме при гипертиреозе. При этом анемия не выражена.

3. Нормоцитарные нормохромные анемии (MCV, MCHC в норме).

Большинство эритроцитов имеют нормальные размеры и концентрацию гемоглобина. Такое состояние, когда уровень эритроцитов в крови снижен, а MCHC и MCV находятся в пределах нормальных значений, может свидетельствовать о недостаточном эритропоэзе в костном мозге и отсутствии ретикулоцитов. Наблюдается при не регенеративной анемии. И при следующих состояниях:

·                                 хроническое воспаление и неоплазия;

·                                 хроническая болезнь почек;

·                                 эндокринная недостаточность;

·                                 аплазия и гипоплазия костного мозга;

·                                 отравления соединениями тяжелых металлов.

4. Микроцитарные гипохромные анемии (снижение MCHC и MCV).

Наблюдаются при железодефицитной анемии у собак и кошек. Стоит учитывать, что изменение индексов в сторону снижения возникает только на стадиях выраженного дефицита железа. В таких случаях можно наблюдать изменения в морфологии большинства эритроцитов.

Наблюдаются при:

  • портосистемных шунтах у собак и кошек;

  • длительном лечении рекомбинантным эритропоэтином;

  • применении лекарственных препаратов или агентов, ингибирующих синтез гема;

  • печеночном липидозе у кошек.

В норме встречается у собак пород акита-ину и шиба-ину, при этом анемия отсутствует.

Стоит помнить, о таком явлении, как физиологическая анемия у новорожденных. Понижение эритроцитарных показателей обусловлено всасыванием белков молозива и, как следствие, повышением объема плазмы за счет осмотического эффекта. Также играют роль снижение продукции эритроцитов в раннем постнатальном периоде, укороченное время жизни эритроцитов и быстрый рост организма животного.

Несмотря на высокую точность и технологичность современных гематологических анализаторов, ручной подсчет лейкоцитарной формулы позволяет провести более детальный анализ клинико-морфологических данных, а также предотвратить возможные диагностические ошибки.

Лейкоцитарная формула (лейкограмма) – процентное соотношение различных видов лейкоцитов. Определяется методом ручного подсчета в окрашенном мазке крови с использованием световой микроскопии.

Таблица 2. Клетки лейкоцитарного ряда, учитываемые при подсчете лейкограммы.

Тип клеток

Функциональная роль

Количество (% от общего числа лейкоцитов)

Нейтрофильные палочкоядерные гранулоциты (палочкоядерные нейтрофилы)

Предшественники сегментоядерных клеток. Обеспечивают антибактериальный иммунный ответ.

0-4%

нейтрофильные сегментоядерные гранулоциты (сегментоядерные нейтрофилы)

Миграция в ткани с целью фагоцитоза бактерий.

50-70%

Лимфоциты (B-лимфоциты и Т-лимфоциты; морфологически не различимы)

B-лимфоциты (20% от общего числа лимфоцитов). Зрелые лимфоциты и плазматические клетки. Продуцирование антител. T-лимфоциты (70%) оказывают цитотоксическое действие против вирусов, чужеродных антигенов и опухолевых клеток.

 

20-50%

Моноциты

Фагоцитоз бактерий, простейших, грибов, чужеродных антигенов. Трансформируются в тканях-мишенях.

2-8%

Эозинофильные гранулоциты(эозинофилы)

Иммунная защита от паразитов; регуляция иммунного ответа.

1-4%

базофильные гранулоциты)

Регуляция иммунного ответа на местные воспалительные процессы

0-1%

Сдвиг лейкоцитарной формулы влево – увеличение количества незрелых (палочкоядерных) нейтрофилов, появление юных клеток (метамиелоциты, миелоциты) чаще наблюдается при острых инфекционных заболеваниях, ацидозах. Может возникать на фоне физического перенапряжения и коматозных состояний.

Сдвиг лейкоцитарной формулы вправо – уменьшение нормального количества палочкоядерных нейтрофилов и увеличение числа сегментоядерных нейтрофилов с гиперсегментированными ядрами. Встречается при мегалобластных анемиях, болезнях почек и печени. Может наблюдаться после переливания крови.

Возможные диагностические ошибки преаналитического этапа

Наиболее распространенной проблемой при автоматизированном подсчете является ложное занижение количества тромбоцитов. Значительно чаще ложная тромбоцитопения наблюдается у кошек. В первую очередь, это связано с морфологическими особенностями тромбоцитов у кошек, а именно, – нередко выраженным анизоцитозом с преобладанием макроформ, что нередко затрудняет автоматизированный подсчет и приводит к ложному занижению показателя общего числа тромбоцитов. Ложные снижения количества тромбоцитов могут встречаться при широком спектре нарушений, таких как аутоиммунные заболевания, вирусные и бактериальные инфекции, хронические воспалительные заболевания. Спонтанная агрегация тромбоцитов может быть проявлением таких факторов как иммунологический (антитромбоцитарные антитела), химический (антикоагулянты) и физический (температурный). Также, стоит учитывать явление EDTA-зависимой тромбоцитопении.

EDТА-зависимая тромбоцитопения является следствием взаимодействия антитромбоцитарных антител с антигенами тромбоцитов в присутствии EDТА и при воздействии низких температур. Чтобы избежать агрегации рекомендуется пропускать кровь через анализатор   в промежутке 0-5 мин. или через 1 час и более после взятия крови. В промежутке 5 мин. – 1 час происходит временная агрегация тромбоцитов, что может привести к их ложному снижению в пробе крови. Непосредственно после взятия крови исключается возможность спонтанной агрегации тромбоцитов. 

                                               

Рис.1. Агрегация тромбоцитов. Окраска по Паппенгейму, х1000      Рис.2 Анизоцитоз тромбоцитов. Макротромбоциты. Окраска по Паппенгейму, х1000

Параллельно с этим может искажаться и показатель общего числа лейкоцитов. В подобных случаях при микроскопии окрашенных препаратов обнаруживаются агрегаты тромбоцитов, а также макротромбоциты, которые располагаются как единично, так и в небольших скоплениях. Для достоверного пересчета общего количества лейкоцитов используется камера Горяева.

При выявлении более 5 ядерных эритроцитов при подсчете на 100 клеток обычно проводят дополнительное вычисление скорректированного числа лейкоцитов.

Первоначально, для клинической диагностики, наибольший интерес представляют лабораторно-диагностические показатели анемии, лейкоцитоза и лейкопении.

                                                                            

Рис.3 Микроскопическая картина лейкоцитоза, окраска по Паппенгейму, х1000   Рис.4 Микроскопическая картина лейкопении, окраска по Паппенгейму, х10

В ряде случаев при микроскопии мазков крови выявляются клетки – предшественники эритроцитов и лейкоцитов. Чаще при подсчете лейкоцитарной формулы обнаруживаются оксифильные нормобласты – ядерные клетки, предшественники эритроцитов. Их количество указывается в расчете на 100 лейкоцитов.

                                                         

Рис.5 Оксифильные нормобласты в мазке крови.                                  Рис.6. Агрегатные и пунктатные тромбоциты в мазке крови кошки. 

Окраска по Паппенгейму, х1000                                                               Окраска бриллиантовым крезиловым синим, х1000

                                                                                                                                                   

В таких случаях рекомендовано проводить дополнительное исследование: подсчет ретикулоцитов с использованием специальных методов окраски. Данный вид исследования является доступным, технологически простым, и может быть исполнен в кратчайшие сроки. Целью подсчета процента ретикулоцитов является оценка эффективности эритропоэза в костном мозге.

Ретикулоциты – молодые эритроциты, которые образуются после потери нормобластами ядер, составляют около 1% от всех эритроцитов. Главной отличительной особенностью ретикулоцитов является наличие в них зернисто-нитевидной субстанции (остатки РНК, митохондрий и других клеточных органелл). Определение количества ретикулоцитов – самый последовательный способ оценки силы эритропоэза, но при интерпретации результатов стоит учитывать время начала анемии и величину ретикулоцитоза. В ветеринарной практике, как правило, у собак определяют процентное соотношение агрегатных ретикулоцитов, в то время как у кошек подсчитывают агрегатные и пунктатные ретикулоциты.

В некоторых случаях, при микроскопии мазков венозной крови, обнаруживаются клетки – предшественники лейкоцитопоэза – бластные. В норме бластные клетки присутствуют в костном мозге, их появление в периферической крови является неблагоприятным диагностическим критерием и требует комплексного гематологического обследования животного. Нередко данная цитологическая картина мазка крови сопровождается выраженной анемией и высоким лейкоцитозом. На данном этапе бластные клетки не подлежат дифференциации и, как правило, определяются как недифференцированные бластные клетки. В лейкоформуле данные клетки также указываются в процентном соотношении. Для дальнейшей диагностики и верификации диагноза у кошек, в первую очередь, рекомендовано исключить хронические вирусные инфекции – вирусную лейкемию кошек, вирусный иммунодефицит, а также вирусный перитонит), которые могут давать схожую клиническую картину. Для собак рекомендуется проведение биопсии костного мозга с целью цитологического и цитохимического исследования. У кошек биопсию костного мозга проводят реже в связи с трудоемкостью процесса. Чаще всего пункцию костного мозга проводят из подвздошного гребня. В качестве альтернативы могут быть выбраны ягодичная поверхность крыла подвздошной кости, вертлужная впадина и проксимальная часть плечевой кости. У собак мелких пород и кошек предпочтительно выбрать вертлужную впадину. У животных с сильным ожирением иногда для места пункции выбирают большеберцовый гребень.


Рис.7. Бластные клетки в периферической крови, Окраска по Паппенгейму, х 1000

Специальные методы исследования

В некоторых случаях, основываясь на клинико-морфологических данных, проводятся дополнительные методы исследования. Ярким примером является цитологическое исследование крови, которое назначается ветеринарным врачом в процессе комплексного гематологического обследования животного, а также при наличии объективных показаний.

Цитологическое исследование имеет преимущественные различия с клиническим анализом крови. Помимо автоматизированного подсчета клеток и микроскопии мазка крови, врач-цитолог проводит полный морфологический анализ клеточного состава крови, и, впоследствии, формирует заключение, которое играет значимую роль в установлении окончательного диагноза врачом-клиницистом.

Заключение

Гематологические исследования имеют высокую диагностическую ценность и являются важным этапом в проведении комплексных клинико-диагностических мероприятий. Однако системный подход к интерпретации результатов предполагает детальный анализ полученных данных, позволяющий избежать возможных аналитических ошибок.

Литература

1. Бажибина Е.Б., Коробов А.В., Середа С.В., Сапрыкин В.П. Методологические основы оценки клинико-морфологических показателей крови домашних животных. М.,:Аквариум, 2005.

2. Любина А. Я., Ильичева Л. П. Клинические лабораторные исследования. М., Медицина, 1984.

3. Риган Вильям Дж., Сандерс Тереза Г., Деникола Д. Атлас ветеринарной гематологии, М., Аквариум-Принт, 2015.

4. Уилард М., Твердтен Г., Торнвальд Г., Лабораторная диагностика в клинике мелких домашних животных. М., Аквариум, 2004.

5. Мейер Д,,Харви Д. Ветеринарнаялабораторная медицина. Интерпретация и диагностика. М.,:Софион, 2007.

6. Theml H., Diem H., Haferlach T.,Color Atlas Of Hematology. Thieme, 2004.

7. Rebar A.H. Veterinaria-Hemogram interpretation for dogs and cats. Ralston Purina Company, 2000.


Назад в раздел